抗微生物和抗病毒性组合物以及其制备方法
[0123] 非水性有机溶剂是不同于水的有机溶剂，包括乙醇、甲醇、2-丙醇、变性醇、甲基乙 基酮（MEK)和醋酸正丙基酯（NPAC)。
[0124] 使用非水性有机溶剂的原因是因为氧化亚铜在水中容易氧化成二价铜，但是在非 水溶剂中几乎不氧化。因此，非水性有机溶剂相对于非水性溶剂的量而言，优选地具有〇. 5 质量％或更少的水。
[0125] 可溶于非水性有机溶剂的碱性物质可以是有机物质或无机物质，包括氢氧化钠、 氢氧化钾、氢氧化锂、氨、三乙胺和四丁基氢氧化铵。其中，氢氧化钠和四丁基氢氧化铵是优 选的。碱性物质的溶解度以100g非水性有机溶剂为基准计，优选为0. 05g或以上。
[0126] 如果碱性物质的溶解度以100g非水性有机溶剂为基准计小于0.05g，那么本发 明的分散体不能在碱性环境中充分地维持，并因此当与氧化铜（I)混合时由于酸性而溶解 掉。
[0127] 本发明的分散体优选地还含有可溶于非水性有机溶剂的表面活性剂。含有表面 活性剂减少了抗微生物和抗病毒性组合物的粒子间团聚并提供了位阻，使得可以稳定分散 体。
[0128] 在抗微生物和抗病毒性组合物的分散体中，优选地含有0. 01至20质量％的含量 的表面活性剂。0. 01质量％以上含量的表面活性剂改善了分散体的可分散性，以抑制抗微 生物和抗病毒性组合物沉淀。20质量％或更少含量的表面活性剂降低了由分散体形成的膜 中残留的表面活性剂的量，从而能够防止该膜的抗微生物和抗病毒性能降低。表面活性剂 的含量优选为0.05至15质量％、更优选0.08至10质量％。
[0129] 可溶于非水性有机溶剂的表面活性剂优选为非离子型表面活性剂，包括酯型如甘 油脂肪酸酯、山梨坦脂肪酸酯和蔗糖脂肪酸酯，以及醚型如脂肪醇乙氧化物、聚氧乙烯烷基 苯基醚、辛苯氧基聚乙氧基乙醇（Triton? X-100)和烷基糖苷。其中，辛苯氧基聚乙氧基乙 醇是优选的。
[0130] 5.含有抗微生物和抗病毒性组合物的涂层剂、抗微生物和抗病毒性膜、以及抗微 生物和抗病毒性物品
[0131] 本发明的含有抗微生物和抗病毒性组合物的涂层剂包含在本发明的抗微生物和 抗病毒性组合物的分散体中于10至120°C的环境下可固化的粘合剂组分。作为粘合剂组 分，可以使用无机粘合剂或有机粘合剂。鉴于光催化物质降解粘合剂，无机粘合剂是优选 的。对粘合剂的类型没有特别的限制，例如包括二氧化硅粘合剂、氧化锆粘合剂、氧化铝粘 合剂和钛白（titania)粘合剂及其组合。其中，二氧化娃粘合剂或氧化错粘合剂是优选的。
[0132] 在含有抗微生物和抗病毒性组合物的涂层剂中，粘合剂的含量优选为5至10质 量％、更优选1至8质量％。含量在这个范围的粘合剂能够使涂层剂稳定地分散，向涂覆体 涂布并硬化涂层剂后形成的涂覆膜能够容易地均匀形成，且能够改善附着至涂覆体的涂覆 附着性。
[0133] 本发明的抗微生物和抗病毒性膜是通过应用含有本发明的抗微生物和抗病毒性 组合物的涂层剂、然后使之固化而形成的。在其上应用含有本发明的抗微生物和抗病毒性 组合物的涂层剂的涂覆体包括金属、陶瓷、玻璃、纤维、无纺布、膜、塑料、橡胶、纸和木头。所 述涂覆体的表面可以易于进行附着处理等。不特别地限定涂布方法。作为涂布方法，可以 采用旋转涂层法、浸渍涂层法、喷雾涂层法等。
[0134] 在应用涂层剂后的固化温度取决于所用的粘合剂组分，但是优选为约20至80°C。 通过固化获得的本发明的抗微生物和抗病毒性膜的厚度优选为0. 05至1 μ m、更优选0. 1至 0· 5 μ m〇
[0135] 如果膜厚度是0.05 μ m以下，抗微生物和抗病毒性组合物的量少，从而材料不具 有充分的抗微生物和抗病毒性能.如果膜厚度是1 μ m以上，抗微生物和抗病毒性组合物的 量大，从而材料能够具有足够的抗微生物和抗病毒性能，但是降低了膜的硬度和耐久性。
[0136] 本发明的抗微生物和抗病毒性物品在其至少一个部分的最外表面上（例如人接 触的部分）具有本发明的抗微生物和抗病毒性膜，所述物品例如包括诸如建筑材料、卫生 用品和防污用品等物品。 实施例
[0137] 本发明将特别参照下述实施例阐述本发明。
[0138] 如下进行实施例和比较例的测定和评价。
[0139] XRD 测定
[0140] 通过XRD测定法测定了在各实施例和比较例中获得的抗微生物和抗病毒性组合 物的氧化亚铜粒子的晶体峰归属。在XRD测定中，使用Cu-Ka 1线作为铜靶标，管电压为 45kV，管电流为40mA，测量范围为2 Θ = 20-80度，取样宽度为0.0167度，扫描速率为I. 1 度/分钟。对于该测量使用可从Panalytical B.V.获得的X'PertPRO。
[0141] BET比表面积
[0142] 采用可从Mountech Co.，Ltd获得的自动BET比表面积分析仪"Macsorb, HM model-1208"测量在各实施例和比较例中获得的抗微生物和抗病毒性材料的BET比表面 积。
[0143] 二氧化硅涂覆层的质量
[0144] 通过以下方法测定各实施例和比较例中获得的抗微生物和抗病毒性材料的二氧 化硅涂覆层的质量。将涂覆有二氧化硅的氧化亚铜粒子（0. lg)、Na2CO3(2g)和H3BO3(Ig) 添加至铂坩埚中，并进行碱熔融。冷却后，将熔融的混合物与硝酸溶液混合，以获得混合液。 用ICP发光分光分析装置（产品名称：ICPS-7500,可获自岛津制作公司）测定获得的混合 物溶液。使用IOppm硅标准溶液构建校正曲线。自校正曲线计算出用二氧化硅涂覆的氧化 亚铜粒子的硅的量。从硅的量计算出二氧化硅的质量，并定义为二氧化硅涂覆层的质量。
[0145] 颜色值
[0146] 使用可获自KONICA MINOLTA OPTICS，INC.的分光测色计"CM-3700d"测定颜色值 (L*a*b*值）。
[0147] 环境试验
[0148] 使用可获自ESPEC CORP的小型环境试验机"SH-241"进行环境试验。将抗微生物 和抗病毒性组合物维持在50°C温度和98%湿度下1周。
[0149] 病毒灭活能力的评价：LOG(N/N〇)的测定
[0150] 在采用噬菌体的模型实验中通过下述方法评价了病毒灭活能力。采用对噬菌体 的灭活能力作为病毒灭活能力模型的方法在例如Appl. Microbiol Biotechnol.，79，第 127-133页，2008中有记载，并且已知获得可靠的结果。
[0151] 将滤纸置于深培养皿中，然后加入少量灭菌水。将厚度约5mm的玻璃平台置于滤 纸上。在玻璃平台上放置玻璃板（50mmX50mmX Imm)。在这些玻璃板上分别应用实施例1-4 的抗微生物和抗病毒性材料和比较例1至4的样品以将固体内容物调整至0. 06mg/25cm2 和分别应用实施例5-10的抗微生物和抗病毒性组合物的分散体和比较例5-11的样品以将 固体内容物调整至I. 5mg/25cm2。向各玻璃板滴加预定浓度的之前进行了中和的QB噬菌体 (NBRC20012)混悬液100 yL，然后将PET(聚对苯二甲酸乙二酯）0ΗΡ膜置于各玻璃板上以 使样品表面与噬菌体接触。将深培养皿盖上盖子以制备测量套件。制备多个相同测量套件。
[0152] 使用装有 UV 截除滤器（N-113,可从 NUto Jushi Kogyo Co. ,Ltd.获得）的 15W 白色焚光灯（全白色焚光灯，FL15N，可从Panasonic Corporation获得）作为光源。然后， 将多个测量套件置于光源下照度为800LuX的位置（用可从T0PC0N CORPORATION获得的照 度计頂-5测量）。在预定时间后，测定各玻璃板上样品的噬菌体浓度。
[0153] 通过下述方法测量噬菌体浓度。将各玻璃板上的样品浸入IOmL噬菌体回收液（SM 缓冲液）中，然后用振荡器振荡10分钟。将该噬菌体回收液适当地稀释，将稀释液与分别 培养的大肠杆菌（NBRC13965)的培养液（0D_>1. 0, lX108CFU/mL)混合，然后将混合物置于 37°C的恒温室中，使大肠杆菌感染噬菌体。将所得的液体添加至琼脂培养基中，并于37°C培 养15小时，然后目测测量噬菌斑数目。将计数的噬菌斑数目乘以噬菌体回收液的稀释比以 确定噬菌体浓度N。
[0154] 从初始噬菌体浓度Ntl和预定时间后的噬菌体浓度N确定了噬菌体相对浓度 (LOG(N/N 0))〇
[0155] 在各种条件下评价的病毒灭活能力的结果示于表1-3。
[0156] 实施例1
[0157] 将3000mL蒸馏水加热至5
文档序号 :
【 8515142 】
技术研发人员：李定,黑田靖,细木康弘,宫石壮
技术所有人：昭和电工株式会社
备 注：该技术已申请专利，仅供学习研究，如用于商业用途，请联系技术所有人。
声 明 ：此信息收集于网络，如果你是此专利的发明人不想本网站收录此信息请联系我们，我们会在第一时间删除
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